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  • 第一百一十期 Discovery整合化層析應用案例分享

    2018年08月20日來(lái)源:管理員
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    很多藥企做細胞株篩選,或者抗體糖型的培養工藝調節,搖瓶培養的數量都是非常大的,需要進(jìn)行一系列的平行實(shí)驗、對比實(shí)驗,等到樣品收獲時(shí),給下游純化人員所造成的純化壓力也是巨大的。經(jīng)常聽(tīng)到有人抱怨:領(lǐng)導一直催著(zhù)完成純化,需要送檢看結果,可是再催,純化步驟也還得一步一步來(lái),那么多樣品,怎么可能在短時(shí)間內完成所有純化?



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    ??其實(shí),已有設備生產(chǎn)企業(yè)意識到了這一點(diǎn),而且已經(jīng)研發(fā)出整合化層析技術(shù)來(lái)應對這一難題。整合化層析,即將多步層析整合為一步,從而縮短純化時(shí)間,提高純化效率,這種技術(shù)是否真能起到作用呢?今天,小編就與各位分享一下該技術(shù)的應用案例,跟大家一探究竟。

    1)Protein A - Desalting

    第一步:Protein A,1?mL預裝柱

    第二步:Desalting(分子篩脫鹽換液),10?mL預裝柱

    方法信息

    純化步驟

    Protein A?- Desalting

    第一步?– Protein A

    Buffer A –?平衡液

    25?mM?PB, 150mM NaCl, pH 7.4

    Buffer B –?洗脫液

    100mM citrate, pH 3.5

    Buffer C –?NaOH

    0.1?M?NaOH

    樣品上清液

    10?mL CHO單抗上清液,濃度1.0 mg/mL

    第二步–?Desalting

    Buffer D –?平衡液

    25?mM?PB, pH 7.4

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    層析過(guò)程圖譜:



    ??在該過(guò)程中,Protein A的洗脫組分不經(jīng)過(guò)收集,而是在系統內直接上樣至脫鹽柱,兩步層析整合為一步,從而提高了純化效率。


    ??最終產(chǎn)品經(jīng)SE-HPLC檢測,單體純度為96.5%,可直接用于其它常規檢測

    結果匯總

    產(chǎn)品濃度

    3.7 mg/mL

    產(chǎn)量

    9.92 mg

    單體含量

    96.5%

    聚集體含量

    3.2%

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    2
    )IMAC - Desalting

    第一步:IMAC,1?mL預裝柱Chelate (Cu2+)

    第二步:Desalting(分子篩脫鹽換液),10?mL預裝柱

    方法信息

    純化步驟

    IMAC - Desalting

    第一步?–?IMAC

    Buffer A –?平衡液

    25?mM?PB, 0.5?M NaCl, 10?mM imidazole, pH 7.5

    Buffer B –?洗脫液

    25?mM?PB, 0.5?M NaCl, 0.5?M imidazole, pH 7.5

    Buffer C –?NaOH

    0.1?M?NaOH

    樣品上清液

    5?mL E. coli BL21(DE3)細胞裂解液,過(guò)量表達20 kDa?His6-UCB9 (濃度0.5mg/mL)

    第二步–?Desalting

    Buffer D –?平衡液

    1x PBS, pH 7.4

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    ??層析過(guò)程圖譜:




    ??在該過(guò)程中,IMAC的洗脫組分同樣直接上樣至脫鹽柱,節省了純化時(shí)間。



    ??最終產(chǎn)品經(jīng)SDS-PAGESE-HPLC檢測,單體純度為98.1%,可直接用于其它常規檢測。

    結果匯總

    產(chǎn)品濃度

    1.1?mg/mL

    產(chǎn)量

    2.3?mg

    單體含量

    98.1%

    聚集體含量

    1.9%

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    3
    )Protein A - CIEX - Desalting

    第一步:Protein A,1?mL預裝柱

    第二步:CIEX,5 mL預裝柱(SP

    第三步:Desalting(分子篩脫鹽換液),10?mL預裝柱

    方法信息

    純化步驟

    Protein A?-?CIEX?- Desalting

    第一步?– Protein A

    Buffer A –?平衡液

    25?mM?PB, 150mM NaCl, pH 7.0

    Buffer B –?洗脫液

    100mM citrate, pH 3.5

    Buffer C –?NaOH

    0.1?M?NaOH

    樣品上清液

    10?mL CHO單抗上清液,濃度1.0 mg/mL

    第二步??CIEX

    Buffer?D–?平衡液

    25?mM?PB, pH?6.0

    Buffer?E?–?洗脫液

    25?mM?PB,?0.5 M NaCl,?pH?6.0

    Buffer C –?NaOH

    0.1?M?NaOH

    第三步??Desalting

    Buffer?F?–?平衡液

    25?mM?PB, pH 7.0

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    ??層析過(guò)程圖譜:



    ??在該過(guò)程中,Protein A的洗脫組分經(jīng)過(guò)在線(xiàn)稀釋?zhuān)苯由蠘又罜IEX層析柱,CIEX進(jìn)行線(xiàn)性洗脫,去除降解物及聚集體,將目標組分直接上樣至脫鹽柱。三步層析緊密銜接,前一步層析的洗脫與后一步層析的上樣同時(shí)進(jìn)行,使得純化效率顯著(zhù)提高。



    ??最終產(chǎn)品經(jīng)SE-HPLC檢測,純度高達99.5%,二聚體含量?jì)H為0.5%,比Protein A - Desalting兩步層析所得產(chǎn)品的二聚體含量降低近6倍,該產(chǎn)品可直接用于氨基酸序列測定、二硫鍵測定以及糖型分析等高純度要求的檢測。

    結果匯總

    產(chǎn)品濃度

    0.91?mg/mL

    產(chǎn)量

    6.7?mg

    單體含量

    99.5%

    聚集體含量

    0.5%

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    4)
    高通量(HT)純化應用

    ??Discovery系統額外擴展出35個(gè)入口用于上樣,即實(shí)現整合化層析的高通量純化應用。通過(guò)Discovery Wizard,可將每個(gè)入口的上樣體積、流速等信息預先設定,即可實(shí)現高通量自動(dòng)化操作。
    ??采用Protein A - CIEX - Desalting三步向導模塊,每次上樣10 mL單抗上清液(1.0 mg/mL),每次產(chǎn)量均≥6.5 mg。單個(gè)樣品的純化耗時(shí)約為74 min,在24 h內純化出多達19個(gè)樣品!而且該時(shí)間包含了層析柱的清洗環(huán)節。該系統持續運行5天,純化樣品總數量高達91個(gè)。



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